Análisis de leucograma de terneros en etapa lechal suplementados con un complejo vitamínico-mineral y levaduras

ZIMMERMANN, J.A.; BARONI, L.; FUSARI, M.L.; ASTESANA, D.M.; DI LASCIO, N.; MENZEGUES, S.; ROMANO, S.G.

Esperanza

Jornada; X Jornada de Difusión de la Investigación y Extensión; 2022

Facultad de Ciencias Veterinarias - Universidad Nacional del Litoral

La crianza artificial de terneros en los rodeos lecheros es una etapa crítica para el sistema productivo. En este periodo, los problemas sanitarios que se destacan son las enfermedades diarreicas y respiratorias, las que pueden producir una disminución en el consumo de alimento, baja ganancia de peso, retraso del desarrollo y mortalidad2. Esto afecta la cantidad de hembras para reposición del rodeo y perjudica el crecimiento de mismo. En este contexto, el uso indiscriminado de antimicrobianos (ATM) conduce a la aparición de resistencia, siendo un problema de salud pública3. Por ello, es necesario la búsqueda de alternativas al uso de ATM1, como el uso de aditivos con prebióticos, probióticos y la suplementación con minerales y vitaminas. El objetivo de este trabajo fue evaluar el efecto de la suplementación con un complejo vitamínico-mineral y levaduras sobre el leucograma de terneros en etapa lechal. Para el experimento se utilizaron 20 terneros raza Holstein, homogéneos en su peso. Los animales fueron divididos al azar en dos grupos de 10 (con igual número de hembras y machos) en grupo control (GC) y grupo tratado (GT). Fueron recibidos en la crianza durante las primeras 6 h de vida y luego de haber consumido 2 litros de calostro. La alimentación consistió en una dieta comercial (Bladek®: 3,1 Mcal EM/Kg/MS; 18,5% PB) + 4 L de leche divididos en dos tomas de 2 L c/u, a 7:00 a.m. y 4:00 p.m., suministrada a 38 °C. El GT recibió en la toma de leche de la tarde, un suplemento alimenticio compuesto por levaduras vivas Saccharomyces cerevisiae (Procreatin 7®), minerales orgánicos cobre, zinc, selenio y manganeso (Novus® Internacional), vitaminas A, D y E, todos ajustados a un 120% de los requerimientos NRC (2001) en una dosis de 5 gr/ternero/día durante 42 días. En las semanas 1, 2 y 3 del experimento se obtuvieron muestras de sangre (5 mL) con anticoagulante EDTA a partir de punción en vena yugular de todos los terneros. Las muestras fueron procesadas en un contador hematológico automatizado (Mindray BC-3000Plus, Nanshan, China) para obtener el recuento de globulos blancos (GB). Una parte de la sangre fue utilizada para obtener la fórmula leucocitaria relativa (FLR) mediante la realización de un frotis teñido con May-Grünwald Giemsa y posterior observación en microscopio para el recuento diferencial. La FLR y el recuento de GB se utilizaron para obtener la fórmula leucocitaria absoluta (FLA) de las diferentes líneas celulares. Además, se utilizó el recuento de neutrófilos y linfocitos para obtener el índice de neutrófilos/linfocitos (N/L). Los datos fueron analizados estadísticamente mediante ANOVA de medidas repetidas y luego ANOVA de 1 vía para las comparaciones entre las semanas. Los resultados se presentan en la Tabla 1. El recuento de GB en las semanas de muestreo estuvo entre 5030 y 6680 cel/uL y no se encontraron diferencias entre los grupos (p=0,690). Los valores de las células polimorfonucleares fueron, para neutrófilos entre 1960 – 4260 cel/uL, basófilos entre 0 – 50 cel/uL y eosinófilos 10 – 40 cel/uL y no se observaron diferencias entre los grupos. Los recuentos de células mononucleares fueron, para linfocitos, 910 – 2900 cel/uL y para monocitos 30 – 340 cel/uL, sin diferencias entre los grupos. El índice N/L no mostró diferencias entre GC y GT (P=0,828). No se encontraron diferencias en el análisis semanal dentro de cada grupo para las variables estudiadas. Los parámetros hematológicos son buenos indicadores del estado fisiológico de los animales y son útiles para el pronóstico de enfermedades, así como también para el monitoreo terapéutico y de la dieta que consumen. Los parámetros sanguíneos que pueden indicar efectos inmunitarios, no cambian en animales criados en buenas condiciones de alimentación y ambiente. Esto podría explicar los resultados obtenidos en nuestro experimento. Se debería continuar evaluando los parámetros sanguíneos en otras condiciones de crianza, como por ejemplo bajo condiciones de estrés o experimentalmente infectados por patógenos.