Analisis in-vitro de scaffolds de polímeros biodegradables conteniendo vidrios

FERNANDEZ, JM; MOLINUEVO, MS; BOCCACCINI AR; CORTIZO, MS; CORTIZO, AM

Mar del Plata

Congreso; Reunión Anual de SAIC-SAFIS 2008; 2008

Sociedad Arg. de Investigación Clínica-Sociedad Arg. de Fisiologia

Resumen: <!-- /* Style Definitions */ p.MsoNormal, li.MsoNormal, div.MsoNormal {mso-style-parent:""; margin:0cm; margin-bottom:.0001pt; mso-pagination:widow-orphan; font-size:12.0pt; font-family:"Times New Roman"; mso-fareast-font-family:"Times New Roman";} @page Section1 {size:612.0pt 792.0pt; margin:70.85pt 3.0cm 70.85pt 3.0cm; mso-header-margin:36.0pt; mso-footer-margin:36.0pt; mso-paper-source:0;} div.Section1 {page:Section1;} --> La ingeniería de tejidos requiere el uso de scaffolds que sirven de matrices para la adhesión, crecimiento y diferenciación de las células, in vitro e in vivo. Estos scaffolds realizados con biomateriales, generalemente sustancias poliméricas de diversos orígenes, son reabsorbidos y reemplazados por matriz extracelular. Para el caso del tejido óseo, se requiere que el material posea cierta tenacidad así como también resistencia mecánica, para soportar los esfuerzos mecánicos que le imprimen los músculos. Hemos demostrado que scaffolds obtenidos a partir de poliésteres (poli-b-propiolactona(PPL) y poli-e-caprolactona(PCL)) y polifumaratos (polifumarato de diisopropilo (PFIP)) permiten el desarrollo y diferenciación de osteoblastos en cultivo y pueden ser degradados por células del tejido óseo. Para la mejora de las propiedades biomecánicas, suelen asociarse polímeros sintéticos y materiales inorgánicos (hidroxiapatita, vidrios, etc). Para ello, hemos sintetizado matrices de PPL, PCL y PFIP conteniendo partículas de vidrio bioactivo (Bioglass®) por el método de casting. La proporción de vidrio bioactivo fue de 20% para los poliésteres y de 5% para el PFIP. Las características superficiales de las membranas, determinadas por microscopía electrónica de barrido, muestran que la adición de bioglass incrementa la rugosidad superficial de las membranas. Los ensayos de biocompatibilidad incluyen estudios de morfología (tinción con Giemsa), crecimiento (contenido de proteínas totales, Bradford) y diferenciación(colágeno y fosfatasa alcalina(FAL)) de osteoblastos UMR106 en cultivo, empleando como control platos plásticos de cultivo tisular. Encontramos que las células presentan una morfología normal y son capaces de proliferar en las membranas (PPL: 101±5; PCL: 122±1; PFIP: 94±9; Plástico: 100±16). Los osteoblastos presentaron niveles de actividad de FAL y colageno comparables al control. Así, estos polímeros soportan adecuadamente el desarrollo y diferenciación osteoblástico.