INVESTIGADORES
TRUCCO BOGGIONE Carolina
congresos y reuniones científicas
Título:
CARACTERIZACIÓN MOLECULAR DE UN NUEVO HAPLOTIPO RH
Autor/es:
TRUCCO BOGGIONE, CAROLINA; PRINCIPI, CINTIA; LUJÁN BRAJOVICH, MELINA ELIANA; MUFARREGE, NICOLÁS; MATTALONI, STELLA MARIS; COTORRUELO, CARLOS
Lugar:
Rosario
Reunión:
Congreso; XXI Congreso y la XXXIX Reunión Anual de la Sociedad de Biología de Rosario; 2019
Institución organizadora:
Sociedad de Biología de Rosario
Resumen:
El antígeno D es un mosaico de epitopes que se expresan en la proteína RhD del glóbulo rojo. Este polipéptido está codificado por el gen RHD que junto al gen RHCE integran el locus RH. El gen RHCE codifica para la proteína RhCE que expresa los epitopes C, c, E y e. Múltiples alelos RHD son responsables de expresiones alteradas del antígeno D (Dvar). El objetivo de este trabajo fue caracterizar a nivel molecular el alelo responsable de una expresión débil del antígeno D y estudiar su segregación familiar. Las muestras con expresión aberrante del antígeno D fueron obtenidas de dos hermanos (H1 y H2) y su padre (PP). También se estudió una muestra obtenida de la madre (MM). Se investigó el fenotipo D por hemaglutinación con 4 reactivos monoclonales anti-D: IgM/IgG (clones TH28/MS26), IgM (clon MS201), IgM (clon RUM1) e IgM (clones LDM1+ESD1M). También se estudió el fenotipo Rh con anticuerpos anti-C (clon MS24), anti-c (clon MS33), anti-E (clon MS258/MS80) y anti-e (clones MS16+MS21+MS63). Se obtuvo ADN genómico a través del método de salting-out. Se utilizaron técnicas de PCR-SSP para investigar la presencia alelos RHD*D débiles tipo 1, 2, 3 ó 4 y RHD*DVII y para detectar polimorfismos característicos de cada uno de los 10 exones del gen RHD. Finalmente, se secuenciaron los 10 exones según el método de Sanger en electroforesis capilar. Las reacciones de hemaglutinación de H1, H2 y PP con los diferentes reactivos anti-D fueron negativas excepto para el clon RUM1, que mostró una reacción débilmente positiva. La muestra MM fue D positiva. El fenotipo Rh completo de H1 y H2 resultó Dvar,C-,c+,E+,e- mientras que para PP fue Dvar,C-,c+,E-,e+ y para MM fue D,C+,c+,E+,e+. Debido al aparente caso de exclusión de la paternidad se investigó el antígeno E en la muestra PP utilizando 2 reactivos monoclonales anti-E IgM (clones MS260 y MS80). Se observó aglutinación débil con el clon MS260 indicando que el fenotipo Rh de la muestra PP era Dvar,C-,c+,Evar,e+. Los estudios de PCR permitieron descartar los alelos RHD*D débil Tipo 1 al 4 y RHD*DVII y mostraron la presencia de los 10 exones del gen RHD. El análisis de la secuencia del gen RHD identificó al polimorfismo c.46C en el exón 1 responsable del cambio aminoacídico Trp16Arg. Por otro lado, en la muestra con expresión alterada del antígeno E, la secuenciación del gen RHCE identificó las mutaciones c.697G, c.712G, c.733G y c.744C en el exón 5 del alelo RHcE responsables de las sustituciones Gln233Glu, Met238Val y Leu245Val. La mutación c.744C resultó ser silenciosa. El estudio de segregación alélica en el grupo familiar permitió determinar que ambos alelos mutados se encontraban en posición cis. La baja frecuencia poblacional de las variantes alélicas RHD y RHcE halladas en este estudio sugiere un desequilibrio de ligamiento entre las mismas. La descripción de asociaciones alélicas en cis es útil para la identificación de anticuerpos dirigidos contra antígenos Rh de alta frecuencia y facilitan la compatibilidad transfusional en pacientes con genotipos poco frecuentes. El cambio de aminoácidos hidrofóbicos (Trp) o polares (Gln) por residuos cargados (Arg, Glu) dificultaría el correcto ensamblaje de los polipéptidos Rh en la membrana del eritrocito provocando la expresión alterada del antígeno D y del antígeno E. Nuestros resultados muestran que los estudios moleculares son un complemento necesario para la caracterización de muestras con fenotipo Rh variante.