Alternativa natural para tratamiento antiviral de infecciones genitales. Estudio de la capacidad antiviral ?in vitro? de extractos vegetales contra CpHV-1

CAROLA FERRECCIO; MAIDANA SILVINA S.; GRAZZIOTTO NOELIA; SALVAT ADRIANA; KONIGHEIM BRENDA ; ROMERA S.A.

Cordoba

Congreso; XXXIX Reunión científica anual, Sociedad Argentina de Virología; 2019

SAV

Alternativa natural para tratamiento antiviral de infecciones genitales. Estudio en modelo de infección de herpesvirus caprino del efecto antiviral de extractos naturales de plantas frente a infecciones genitales de alfaherpesvirus. Ferreccio Carola, Maidana Silvina, Grazziotto Noelia, Salvat Adriana, Konigheim Brenda, Romera AlejandraPara las herpervirosis del hombre se han desarrollado drogas anti-virales como el aciclovir, cuya aplicación en los animales por ahora no es generalizada. Sin embargo ésta y otras drogas se han utilizado experimentalmente en animales ya que la búsqueda de fármacos con efecto antiviral requiere hacer uso de modelos que reproduzcan la patología viral lo más similarmente posible a como ocurre en el hospedador natural. Herpesvirus caprino 1 (CpHV1) comparte varias características biológicas con el HSV-2 humano, tales como, el tropismo por el epitelio vaginal, el tipo de lesiones genitales y el establecimiento de la latencia en los ganglios sacros (Tempesta y col, 1999a), (Withey y col, 1996), (Tempesta y col, 2000). El herpesvirus caprino 1 (CpHV1) es un alfaherpesvirus. La patogenia sigue los lineamientos generales de la infección por herpesvirus: son epiteleotropos y tienen afinidad por la mucosa respiratoria y genital, donde se multiplican, generan manifestaciones clínicas, graves en cabritos, subclínica en adultos o causando abortos, vulvovaginitis o balanopostitis (Koptopoulos G. 1992). Actualmente en cabras no existe tratamiento específico, hay reportes de desarrollo de distintas vacunas clásicas inactivadas (Tempesta 2001, Camero, 2007) sin embargo, no están licenciadas.y el más común consiste en la administración de antibióticos para combatir la complicación secundaria. Se probaron 3 extractos: Jarilla (Larrea divaricata), Menta (Mintosthachys verticilata) y Tola (Parastrephia quadrangularis). Como control positivo se utilizó Aciclovir.El ensayo de citotoxicidad se basa en detectar con el microscopio óptico la dilución a partir de la cual no se observa efecto citopatico visible. No se observó a partir de la dilución 1/96 (1.04 mg/ml).El paso siguiente fue realizar la concentración citotóxica 50 (CC50) y la concentración inhibitoria 50 (CI50) por medio del ensayo de captación del Rojo Neutro. Comienzo a partir de las diluciones que no veo efecto citotóxico con microscopio óptico. El rojo neutro es captado por las células (específicamente por los lisosomas y endosomas) y en la medida que la célula pierda viabilidad por la acción del compuesto que se evalúa se libera al medio el colorante pues solo las células viables son capaces de retener el colorante en su interior. Para Jarilla, a una concentración de 1.04 mg/ml, obtuvimos una viabilidad celular del 58%, para Menta a la misma concentración obtuvimos una viabilidad del 49.1%, para Tola (obtenida en noviembre 2016) fue del 53.8% y para Tola (pero obtenida en 2019) fue del 49.2%. Con Aciclovir se obtuvo un 90% de viabilidad celular. La inhibición en esa misma dilución para Jarilla fue del 50% y para Menta del 32%.El ensayo de placas de lisis se realizó la infección con CpHV1 y se agregó extracto en dos tiempos diferentes (45 min PI y 24 hs PI). En el control de virus se visualizaron un total de 36 placas, con Jarilla se observaron 2 placas (colocando el extracto a los 45 min PI) y 6 placas (colocándolo a las 24 hs PI). Con Menta se vieron 21 placas (45 min PI) y 38 placas (a las 24 hs