INFLUENCIA DEL NÚMERO DE MICROORGANISMOS EN LA FORMACIÓN DE BIOFILM DE BACTERIAS LÁCTICAS VAGINALES (BLV) BENÉFICAS

LECCESE TERRAF, MC; JUÁREZ TOMÁS, MS; OTERO, MC; NADER, MEF; SILVA, C

Tafi del Valle. Tucumán

Jornada; XXVIII Jornadas de la Asociación de Biología de Tucumán; 2011

Asociación de Biología de Tucumán

INFLUENCIA DEL NÚMERO DE MICROORGANISMOS EN LA FORMACIÓN DE BIOFILM DE BACTERIAS LÁCTICAS VAGINALES (BLV) BENÉFICAS Leccese Terraf, MC1, Juárez Tomás, MS2, Otero, MC2, Nader, MEF2, Silva, C1 1Facultad de Bqca., Qca. y Fcia. UNT. Ayacucho 471. 2CERELA-CONICET. Chacabuco 145. Tucumán. Argentina. fnader@cerela.org.ar Chacabuco 145. Tucumán. Argentina. fnader@cerela.org.ar Chacabuco 145. Tucumán. Argentina. fnader@cerela.org.ar 1Facultad de Bqca., Qca. y Fcia. UNT. Ayacucho 471. 2CERELA-CONICET. Chacabuco 145. Tucumán. Argentina. fnader@cerela.org.ar Chacabuco 145. Tucumán. Argentina. fnader@cerela.org.ar Chacabuco 145. Tucumán. Argentina. fnader@cerela.org.ar 1Facultad de Bqca., Qca. y Fcia. UNT. Ayacucho 471. 2CERELA-CONICET. Chacabuco 145. Tucumán. Argentina. fnader@cerela.org.ar Chacabuco 145. Tucumán. Argentina. fnader@cerela.org.ar Chacabuco 145. Tucumán. Argentina. fnader@cerela.org.ar 1, Juárez Tomás, MS2, Otero, MC2, Nader, MEF2, Silva, C1 1Facultad de Bqca., Qca. y Fcia. UNT. Ayacucho 471. 2CERELA-CONICET. Chacabuco 145. Tucumán. Argentina. fnader@cerela.org.ar Chacabuco 145. Tucumán. Argentina. fnader@cerela.org.ar Chacabuco 145. Tucumán. Argentina. fnader@cerela.org.ar Facultad de Bqca., Qca. y Fcia. UNT. Ayacucho 471. 2CERELA-CONICET. Chacabuco 145. Tucumán. Argentina. fnader@cerela.org.arfnader@cerela.org.ar Las biopelículas con bacterias lácticas están presentes en los tractos gastrointestinal y genitourinario, y ejercerían un papel protector frente a la colonización de microorganismos patógenos. Biofilms se definen como sistemas biológicos con un alto nivel de organización, en los que los microorganismos forman una comunidad estructurada, coordinada y funcional, lo que favorece su permanencia en las superficies mucosas. En trabajos previos se determinó que Lactobacillus reuteriLactobacillus reuteri CRL1324, L. rhamnosus CRL1332 y L. delbrueckii CRL1510 forman biofilm en MRS caldo sin Tween 80 (MRS–T), mientras que L. gasseri CRL1263 no expresa esta propiedad. Los objetivos de este trabajo fueron estudiar el efecto del número de células viables de diferentes cepas de BLV (aisladas de vagina humana y seleccionadas por sus propiedades benéficas) en la formación de biofilm, y evaluar la estructura del biofilm formado. El biofilm se evaluó en MRS–T y LAPTg-T. Los inóculos se prepararon a partir de cultivos de 14 h (en medio de cultivo agotado o en solución fisiológica (SF), y ajustados a DO540nm de 0,6; 1 y 1,5). La formación de biofilm se cuantificó después de 72 h de incubación a 37ºC, por coloración con cristal violeta y DO570nm. La morfología de las biopelículas se monitoreó con microscopía de fluorescencia (tinción con naranja de acridina). de las biopelículas se monitoreó con microscopía de fluorescencia (tinción con naranja de acridina). de las biopelículas se monitoreó con microscopía de fluorescencia (tinción con naranja de acridina). 72 h de incubación a 37ºC, por coloración con cristal violeta y DO570nm. La morfología de las biopelículas se monitoreó con microscopía de fluorescencia (tinción con naranja de acridina). de las biopelículas se monitoreó con microscopía de fluorescencia (tinción con naranja de acridina). de las biopelículas se monitoreó con microscopía de fluorescencia (tinción con naranja de acridina). 72 h de incubación a 37ºC, por coloración con cristal violeta y DO570nm. La morfología de las biopelículas se monitoreó con microscopía de fluorescencia (tinción con naranja de acridina). de las biopelículas se monitoreó con microscopía de fluorescencia (tinción con naranja de acridina). de las biopelículas se monitoreó con microscopía de fluorescencia (tinción con naranja de acridina). cultivos de 14 h (en medio de cultivo agotado o en solución fisiológica (SF), y ajustados a DO540nm de 0,6; 1 y 1,5). La formación de biofilm se cuantificó después de 72 h de incubación a 37ºC, por coloración con cristal violeta y DO570nm. La morfología de las biopelículas se monitoreó con microscopía de fluorescencia (tinción con naranja de acridina). de las biopelículas se monitoreó con microscopía de fluorescencia (tinción con naranja de acridina). de las biopelículas se monitoreó con microscopía de fluorescencia (tinción con naranja de acridina). 72 h de incubación a 37ºC, por coloración con cristal violeta y DO570nm. La morfología de las biopelículas se monitoreó con microscopía de fluorescencia (tinción con naranja de acridina). de las biopelículas se monitoreó con microscopía de fluorescencia (tinción con naranja de acridina). de las biopelículas se monitoreó con microscopía de fluorescencia (tinción con naranja de acridina). 72 h de incubación a 37ºC, por coloración con cristal violeta y DO570nm. La morfología de las biopelículas se monitoreó con microscopía de fluorescencia (tinción con naranja de acridina). de las biopelículas se monitoreó con microscopía de fluorescencia (tinción con naranja de acridina). de las biopelículas se monitoreó con microscopía de fluorescencia (tinción con naranja de acridina). cultivos de 14 h (en medio de cultivo agotado o en solución fisiológica (SF), y ajustados a DO540nm de 0,6; 1 y 1,5). La formación de biofilm se cuantificó después de 72 h de incubación a 37ºC, por coloración con cristal violeta y DO570nm. La morfología de las biopelículas se monitoreó con microscopía de fluorescencia (tinción con naranja de acridina). de las biopelículas se monitoreó con microscopía de fluorescencia (tinción con naranja de acridina). de las biopelículas se monitoreó con microscopía de fluorescencia (tinción con naranja de acridina). 72 h de incubación a 37ºC, por coloración con cristal violeta y DO570nm. La morfología de las biopelículas se monitoreó con microscopía de fluorescencia (tinción con naranja de acridina). de las biopelículas se monitoreó con microscopía de fluorescencia (tinción con naranja de acridina). de las biopelículas se monitoreó con microscopía de fluorescencia (tinción con naranja de acridina). 72 h de incubación a 37ºC, por coloración con cristal violeta y DO570nm. La morfología de las biopelículas se monitoreó con microscopía de fluorescencia (tinción con naranja de acridina). de las biopelículas se monitoreó con microscopía de fluorescencia (tinción con naranja de acridina). de las biopelículas se monitoreó con microscopía de fluorescencia (tinción con naranja de acridina). propiedad. Los objetivos de este trabajo fueron estudiar el efecto del número de células viables de diferentes cepas de BLV (aisladas de vagina humana y seleccionadas por sus propiedades benéficas) en la formación de biofilm, y evaluar la estructura del biofilm formado. El biofilm se evaluó en MRS–T y LAPTg-T. Los inóculos se prepararon a partir de cultivos de 14 h (en medio de cultivo agotado o en solución fisiológica (SF), y ajustados a DO540nm de 0,6; 1 y 1,5). La formación de biofilm se cuantificó después de 72 h de incubación a 37ºC, por coloración con cristal violeta y DO570nm. La morfología de las biopelículas se monitoreó con microscopía de fluorescencia (tinción con naranja de acridina). de las biopelículas se monitoreó con microscopía de fluorescencia (tinción con naranja de acridina). de las biopelículas se monitoreó con microscopía de fluorescencia (tinción con naranja de acridina). 72 h de incubación a 37ºC, por coloración con cristal violeta y DO570nm. La morfología de las biopelículas se monitoreó con microscopía de fluorescencia (tinción con naranja de acridina). de las biopelículas se monitoreó con microscopía de fluorescencia (tinción con naranja de acridina). de las biopelículas se monitoreó con microscopía de fluorescencia (tinción con naranja de acridina). 72 h de incubación a 37ºC, por coloración con cristal violeta y DO570nm. La morfología de las biopelículas se monitoreó con microscopía de fluorescencia (tinción con naranja de acridina). de las biopelículas se monitoreó con microscopía de fluorescencia (tinción con naranja de acridina). de las biopelículas se monitoreó con microscopía de fluorescencia (tinción con naranja de acridina). cultivos de 14 h (en medio de cultivo agotado o en solución fisiológica (SF), y ajustados a DO540nm de 0,6; 1 y 1,5). La formación de biofilm se cuantificó después de 72 h de incubación a 37ºC, por coloración con cristal violeta y DO570nm. La morfología de las biopelículas se monitoreó con microscopía de fluorescencia (tinción con naranja de acridina). de las biopelículas se monitoreó con microscopía de fluorescencia (tinción con naranja de acridina). de las biopelículas se monitoreó con microscopía de fluorescencia (tinción con naranja de acridina). 72 h de incubación a 37ºC, por coloración con cristal violeta y DO570nm. La morfología de las biopelículas se monitoreó con microscopía de fluorescencia (tinción con naranja de acridina). de las biopelículas se monitoreó con microscopía de fluorescencia (tinción con naranja de acridina). de las biopelículas se monitoreó con microscopía de fluorescencia (tinción con naranja de acridina). 72 h de incubación a 37ºC, por coloración con cristal violeta y DO570nm. La morfología de las biopelículas se monitoreó con microscopía de fluorescencia (tinción con naranja de acridina). de las biopelículas se monitoreó con microscopía de fluorescencia (tinción con naranja de acridina). de las biopelículas se monitoreó con microscopía de fluorescencia (tinción con naranja de acridina). cultivos de 14 h (en medio de cultivo agotado o en solución fisiológica (SF), y ajustados a DO540nm de 0,6; 1 y 1,5). La formación de biofilm se cuantificó después de 72 h de incubación a 37ºC, por coloración con cristal violeta y DO570nm. La morfología de las biopelículas se monitoreó con microscopía de fluorescencia (tinción con naranja de acridina). de las biopelículas se monitoreó con microscopía de fluorescencia (tinción con naranja de acridina). de las biopelículas se monitoreó con microscopía de fluorescencia (tinción con naranja de acridina). 72 h de incubación a 37ºC, por coloración con cristal violeta y DO570nm. La morfología de las biopelículas se monitoreó con microscopía de fluorescencia (tinción con naranja de acridina). de las biopelículas se monitoreó con microscopía de fluorescencia (tinción con naranja de acridina). de las biopelículas se monitoreó con microscopía de fluorescencia (tinción con naranja de acridina). 72 h de incubación a 37ºC, por coloración con cristal violeta y DO570nm. La morfología de las biopelículas se monitoreó con microscopía de fluorescencia (tinción con naranja de acridina). de las biopelículas se monitoreó con microscopía de fluorescencia (tinción con naranja de acridina). de las biopelículas se monitoreó con microscopía de fluorescencia (tinción con naranja de acridina). propiedad. Los objetivos de este trabajo fueron estudiar el efecto del número de células viables de diferentes cepas de BLV (aisladas de vagina humana y seleccionadas por sus propiedades benéficas) en la formación de biofilm, y evaluar la estructura del biofilm formado. El biofilm se evaluó en MRS–T y LAPTg-T. Los inóculos se prepararon a partir de cultivos de 14 h (en medio de cultivo agotado o en solución fisiológica (SF), y ajustados a DO540nm de 0,6; 1 y 1,5). La formación de biofilm se cuantificó después de 72 h de incubación a 37ºC, por coloración con cristal violeta y DO570nm. La morfología de las biopelículas se monitoreó con microscopía de fluorescencia (tinción con naranja de acridina). de las biopelículas se monitoreó con microscopía de fluorescencia (tinción con naranja de acridina). de las biopelículas se monitoreó con microscopía de fluorescencia (tinción con naranja de acridina). 72 h de incubación a 37ºC, por coloración con cristal violeta y DO570nm. La morfología de las biopelículas se monitoreó con microscopía de fluorescencia (tinción con naranja de acridina). de las biopelículas se monitoreó con microscopía de fluorescencia (tinción con naranja de acridina). de las biopelículas se monitoreó con microscopía de fluorescencia (tinción con naranja de acridina). 72 h de incubación a 37ºC, por coloración con cristal violeta y DO570nm. La morfología de las biopelículas se monitoreó con microscopía de fluorescencia (tinción con naranja de acridina). de las biopelículas se monitoreó con microscopía de fluorescencia (tinción con naranja de acridina). de las biopelículas se monitoreó con microscopía de fluorescencia (tinción con naranja de acridina). cultivos de 14 h (en medio de cultivo agotado o en solución fisiológica (SF), y ajustados a DO540nm de 0,6; 1 y 1,5). La formación de biofilm se cuantificó después de 72 h de incubación a 37ºC, por coloración con cristal violeta y DO570nm. La morfología de las biopelículas se monitoreó con microscopía de fluorescencia (tinción con naranja de acridina). de las biopelículas se monitoreó con microscopía de fluorescencia (tinción con naranja de acridina). de las biopelículas se monitoreó con microscopía de fluorescencia (tinción con naranja de acridina). 72 h de incubación a 37ºC, por coloración con cristal violeta y DO570nm. La morfología de las biopelículas se monitoreó con microscopía de fluorescencia (tinción con naranja de acridina). de las biopelículas se monitoreó con microscopía de fluorescencia (tinción con naranja de acridina). de las biopelículas se monitoreó con microscopía de fluorescencia (tinción con naranja de acridina). 72 h de incubación a 37ºC, por coloración con cristal violeta y DO570nm. La morfología de las biopelículas se monitoreó con microscopía de fluorescencia (tinción con naranja de acridina). de las biopelículas se monitoreó con microscopía de fluorescencia (tinción con naranja de acridina). de las biopelículas se monitoreó con microscopía de fluorescencia (tinción con naranja de acridina). cultivos de 14 h (en medio de cultivo agotado o en solución fisiológica (SF), y ajustados a DO540nm de 0,6; 1 y 1,5). La formación de biofilm se cuantificó después de 72 h de incubación a 37ºC, por coloración con cristal violeta y DO570nm. La morfología de las biopelículas se monitoreó con microscopía de fluorescencia (tinción con naranja de acridina). de las biopelículas se monitoreó con microscopía de fluorescencia (tinción con naranja de acridina). de las biopelículas se monitoreó con microscopía de fluorescencia (tinción con naranja de acridina). 72 h de incubación a 37ºC, por coloración con cristal violeta y DO570nm. La morfología de las biopelículas se monitoreó con microscopía de fluorescencia (tinción con naranja de acridina). de las biopelículas se monitoreó con microscopía de fluorescencia (tinción con naranja de acridina). de las biopelículas se monitoreó con microscopía de fluorescencia (tinción con naranja de acridina). 72 h de incubación a 37ºC, por coloración con cristal violeta y DO570nm. La morfología de las biopelículas se monitoreó con microscopía de fluorescencia (tinción con naranja de acridina). de las biopelículas se monitoreó con microscopía de fluorescencia (tinción con naranja de acridina). de las biopelículas se monitoreó con microscopía de fluorescencia (tinción con naranja de acridina). caldo sin Tween 80 (MRS–T), mientras que L. gasseri CRL1263 no expresa esta propiedad. Los objetivos de este trabajo fueron estudiar el efecto del número de células viables de diferentes cepas de BLV (aisladas de vagina humana y seleccionadas por sus propiedades benéficas) en la formación de biofilm, y evaluar la estructura del biofilm formado. El biofilm se evaluó en MRS–T y LAPTg-T. Los inóculos se prepararon a partir de cultivos de 14 h (en medio de cultivo agotado o en solución fisiológica (SF), y ajustados a DO540nm de 0,6; 1 y 1,5). La formación de biofilm se cuantificó después de 72 h de incubación a 37ºC, por coloración con cristal violeta y DO570nm. La morfología de las biopelículas se monitoreó con microscopía de fluorescencia (tinción con naranja de acridina). de las biopelículas se monitoreó con microscopía de fluorescencia (tinción con naranja de acridina). de las biopelículas se monitoreó con microscopía de fluorescencia (tinción con naranja de acridina). 72 h de incubación a 37ºC, por coloración con cristal violeta y DO570nm. La morfología de las biopelículas se monitoreó con microscopía de fluorescencia (tinción con naranja de acridina). de las biopelículas se monitoreó con microscopía de fluorescencia (tinción con naranja de acridina). de las biopelículas se monitoreó con microscopía de fluorescencia (tinción con naranja de acridina). 72 h de incubación a 37ºC, por coloración con cristal violeta y DO570nm. 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La morfología de las biopelículas se monitoreó con microscopía de fluorescencia (tinción con naranja de acridina). de las biopelículas se monitoreó con microscopía de fluorescencia (tinción con naranja de acridina). de las biopelículas se monitoreó con microscopía de fluorescencia (tinción con naranja de acridina). 72 h de incubación a 37ºC, por coloración con cristal violeta y DO570nm. La morfología de las biopelículas se monitoreó con microscopía de fluorescencia (tinción con naranja de acridina). de las biopelículas se monitoreó con microscopía de fluorescencia (tinción con naranja de acridina). de las biopelículas se monitoreó con microscopía de fluorescencia (tinción con naranja de acridina). cultivos de 14 h (en medio de cultivo agotado o en solución fisiológica (SF), y ajustados a DO540nm de 0,6; 1 y 1,5). La formación de biofilm se cuantificó después de 72 h de incubación a 37ºC, por coloración con cristal violeta y DO570nm. La morfología de las biopelículas se monitoreó con microscopía de fluorescencia (tinción con naranja de acridina). de las biopelículas se monitoreó con microscopía de fluorescencia (tinción con naranja de acridina). de las biopelículas se monitoreó con microscopía de fluorescencia (tinción con naranja de acridina). 72 h de incubación a 37ºC, por coloración con cristal violeta y DO570nm. La morfología de las biopelículas se monitoreó con microscopía de fluorescencia (tinción con naranja de acridina). de las biopelículas se monitoreó con microscopía de fluorescencia (tinción con naranja de acridina). de las biopelículas se monitoreó con microscopía de fluorescencia (tinción con naranja de acridina). 72 h de incubación a 37ºC, por coloración con cristal violeta y DO570nm. La morfología de las biopelículas se monitoreó con microscopía de fluorescencia (tinción con naranja de acridina). de las biopelículas se monitoreó con microscopía de fluorescencia (tinción con naranja de acridina). de las biopelículas se monitoreó con microscopía de fluorescencia (tinción con naranja de acridina). propiedad. Los objetivos de este trabajo fueron estudiar el efecto del número de células viables de diferentes cepas de BLV (aisladas de vagina humana y seleccionadas por sus propiedades benéficas) en la formación de biofilm, y evaluar la estructura del biofilm formado. El biofilm se evaluó en MRS–T y LAPTg-T. Los inóculos se prepararon a partir de cultivos de 14 h (en medio de cultivo agotado o en solución fisiológica (SF), y ajustados a DO540nm de 0,6; 1 y 1,5). La formación de biofilm se cuantificó después de 72 h de incubación a 37ºC, por coloración con cristal violeta y DO570nm. La morfología de las biopelículas se monitoreó con microscopía de fluorescencia (tinción con naranja de acridina). de las biopelículas se monitoreó con microscopía de fluorescencia (tinción con naranja de acridina). de las biopelículas se monitoreó con microscopía de fluorescencia (tinción con naranja de acridina). 72 h de incubación a 37ºC, por coloración con cristal violeta y DO570nm. La morfología de las biopelículas se monitoreó con microscopía de fluorescencia (tinción con naranja de acridina). de las biopelículas se monitoreó con microscopía de fluorescencia (tinción con naranja de acridina). de las biopelículas se monitoreó con microscopía de fluorescencia (tinción con naranja de acridina). 72 h de incubación a 37ºC, por coloración con cristal violeta y DO570nm. 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La morfología de las biopelículas se monitoreó con microscopía de fluorescencia (tinción con naranja de acridina). de las biopelículas se monitoreó con microscopía de fluorescencia (tinción con naranja de acridina). de las biopelículas se monitoreó con microscopía de fluorescencia (tinción con naranja de acridina). 72 h de incubación a 37ºC, por coloración con cristal violeta y DO570nm. La morfología de las biopelículas se monitoreó con microscopía de fluorescencia (tinción con naranja de acridina). de las biopelículas se monitoreó con microscopía de fluorescencia (tinción con naranja de acridina). de las biopelículas se monitoreó con microscopía de fluorescencia (tinción con naranja de acridina). cultivos de 14 h (en medio de cultivo agotado o en solución fisiológica (SF), y ajustados a DO540nm de 0,6; 1 y 1,5). La formación de biofilm se cuantificó después de 72 h de incubación a 37ºC, por coloración con cristal violeta y DO570nm. 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La morfología de las biopelículas se monitoreó con microscopía de fluorescencia (tinción con naranja de acridina). de las biopelículas se monitoreó con microscopía de fluorescencia (tinción con naranja de acridina). de las biopelículas se monitoreó con microscopía de fluorescencia (tinción con naranja de acridina). 72 h de incubación a 37ºC, por coloración con cristal violeta y DO570nm. La morfología de las biopelículas se monitoreó con microscopía de fluorescencia (tinción con naranja de acridina). de las biopelículas se monitoreó con microscopía de fluorescencia (tinción con naranja de acridina). de las biopelículas se monitoreó con microscopía de fluorescencia (tinción con naranja de acridina). 72 h de incubación a 37ºC, por coloración con cristal violeta y DO570nm. La morfología de las biopelículas se monitoreó con microscopía de fluorescencia (tinción con naranja de acridina). de las biopelículas se monitoreó con microscopía de fluorescencia (tinción con naranja de acridina). de las biopelículas se monitoreó con microscopía de fluorescencia (tinción con naranja de acridina). caldo sin Tween 80 (MRS–T), mientras que L. gasseri CRL1263 no expresa esta propiedad. Los objetivos de este trabajo fueron estudiar el efecto del número de células viables de diferentes cepas de BLV (aisladas de vagina humana y seleccionadas por sus propiedades benéficas) en la formación de biofilm, y evaluar la estructura del biofilm formado. El biofilm se evaluó en MRS–T y LAPTg-T. Los inóculos se prepararon a partir de cultivos de 14 h (en medio de cultivo agotado o en solución fisiológica (SF), y ajustados a DO540nm de 0,6; 1 y 1,5). La formación de biofilm se cuantificó después de 72 h de incubación a 37ºC, por coloración con cristal violeta y DO570nm. La morfología de las biopelículas se monitoreó con microscopía de fluorescencia (tinción con naranja de acridina). de las biopelículas se monitoreó con microscopía de fluorescencia (tinción con naranja de acridina). de las biopelículas se monitoreó con microscopía de fluorescencia (tinción con naranja de acridina). 72 h de incubación a 37ºC, por coloración con cristal violeta y DO570nm. La morfología de las biopelículas se monitoreó con microscopía de fluorescencia (tinción con naranja de acridina). de las biopelículas se monitoreó con microscopía de fluorescencia (tinción con naranja de acridina). de las biopelículas se monitoreó con microscopía de fluorescencia (tinción con naranja de acridina). 72 h de incubación a 37ºC, por coloración con cristal violeta y DO570nm. La morfología de las biopelículas se monitoreó con microscopía de fluorescencia (tinción con naranja de acridina). de las biopelículas se monitoreó con microscopía de fluorescencia (tinción con naranja de acridina). de las biopelículas se monitoreó con microscopía de fluorescencia (tinción con naranja de acridina). cultivos de 14 h (en medio de cultivo agotado o en solución fisiológica (SF), y ajustados a DO540nm de 0,6; 1 y 1,5). La formación de biofilm se cuantificó después de 72 h de incubación a 37ºC, por coloración con cristal violeta y DO570nm. La morfología de las biopelículas se monitoreó con microscopía de fluorescencia (tinción con naranja de acridina). de las biopelículas se monitoreó con microscopía de fluorescencia (tinción con naranja de acridina). de las biopelículas se monitoreó con microscopía de fluorescencia (tinción con naranja de acridina). 72 h de incubación a 37ºC, por coloración con cristal violeta y DO570nm. La morfología de las biopelículas se monitoreó con microscopía de fluorescencia (tinción con naranja de acridina). de las biopelículas se monitoreó con microscopía de fluorescencia (tinción con naranja de acridina). de las biopelículas se monitoreó con microscopía de fluorescencia (tinción con naranja de acridina). 72 h de incubación a 37ºC, por coloración con cristal violeta y DO570nm. La morfología de las biopelículas se monitoreó con microscopía de fluorescencia (tinción con naranja de acridina). de las biopelículas se monitoreó con microscopía de fluorescencia (tinción con naranja de acridina). de las biopelículas se monitoreó con microscopía de fluorescencia (tinción con naranja de acridina). cultivos de 14 h (en medio de cultivo agotado o en solución fisiológica (SF), y ajustados a DO540nm de 0,6; 1 y 1,5). La formación de biofilm se cuantificó después de 72 h de incubación a 37ºC, por coloración con cristal violeta y DO570nm. La morfología de las biopelículas se monitoreó con microscopía de fluorescencia (tinción con naranja de acridina). de las biopelículas se monitoreó con microscopía de fluorescencia (tinción con naranja de acridina). de las biopelículas se monitoreó con microscopía de fluorescencia (tinción con naranja de acridina). 72 h de incubación a 37ºC, por coloración con cristal violeta y DO570nm. La morfología de las biopelículas se monitoreó con microscopía de fluorescencia (tinción con naranja de acridina). de las biopelículas se monitoreó con microscopía de fluorescencia (tinción con naranja de acridina). de las biopelículas se monitoreó con microscopía de fluorescencia (tinción con naranja de acridina). 72 h de incubación a 37ºC, por coloración con cristal violeta y DO570nm. La morfología de las biopelículas se monitoreó con microscopía de fluorescencia (tinción con naranja de acridina). de las biopelículas se monitoreó con mi