Evaluación limnológica general y análisis de las comunidades planctónicas en el lago urbano de Parque Centenario de la Ciudad de Buenos Aires, recomendaciones para su manejo

IRINA IZAGUIRRE; SINISTRO RODRIGO; SOLEDAD FONTANARROSA; MARÍA LAURA SÁNCHEZ

2012-05-02/2012-06-01

1-16

Biológica

Rec.Hidr.-Contaminacion y saneamiento

Metodología:Se realizó un muestreo en el lago urbano de Parque Centenario (CABA) el día 2 de mayo de 2012. Las muestras se recolectaron en tres estaciones de muestreo:Estación A (del lado del anfiteatro), Estación B (cerca de la isla), Estación C (en el muelle). En los tres puntos de muestreo se midieron las siguientes variables limnológicas in situ con sensores de campo: concentración de oxígeno disuelto con un sensor de campo Hanna HI 9146; pH, temperatura del agua pH y conductividad con un equipo Horiba D-54. En la Estación C adicionalmente se estimó la transparencia del agua, a través del disco de Secchi, y la irradiancia incidente y la subacuática (cada 10 cm de profundidad de la columna de agua) mediante un sensor esférico sumergible Li-Cor PAR (Li-250). Se calcularon los coeficientes de atenuación vertical de la luz fotosintéticamente activa (KdPAR). Estos coeficientes se calcularon a partir de la ecuación (Kirk, 1994): Iz= I0 e -kd z Donde Iz es la irradiancia medida a una profundidad determinada, I0 es la irradiancia subsuperficial y z es la profundidad en metros. Por otro lado, se tomaron muestras de agua de cada punto de muestreo, las que se conservaron en frío y oscuridad hasta su traslado al laboratorio. Las muestras para las determinaciones de nutrientes disueltos (nitratos, fosfatos, amonio y silicatos) se filtraron a través de filtros de fibra de vidrio Whatman GF/F. Las concentraciones de fósforo total (PT) y nitrógeno total (NT) se determinaron luego de someter a las muestras a procesos de digestión en autoclave siguiendo los protocolos descriptos en APHA-AWWA-WEF (2005) y CURE-Facultad de Ciencias de Uruguay, UDELAR (comunicación personal). En todos los casos la concentración de nutrientes se determinó por espectrofotometría mediante un espectrofotómetro HACH® DR2800 y sus correspondientes kits de reactivos. Se estimó la concentración de clorofila a fitoplanctónica (Chl a) como una medida de la biomasa algal total. Para ello se filtraron muestras de agua del lago a través de filtros de fibra de vidrio Whatman GF/F. Los filtros se conservaron en freezer a -20 °C y luego se procedió a la extracción del pigmento con etanol caliente (60-70 °C). Los filtros con el solvente se mantuvieron en frío (4 °C) y oscuridad durante 12 hs para favorecer la liberación de pigmentos y luego de ese lapso se determinó la concentración de clorofila a libre de feopigmentos (antes y después de acidificación con HCl) aplicando las ecuaciones de Marker et al. (1980). En cada punto de muestreo se obtuvieron muestras para el análisis cuali y cuantitativo de fitoplancton y de zooplancton. Para los análisis cualitativos de fitoplancton se obtuvieron muestras con red de 15 µm de poro a partir de barridos, las que se transportaron en vivo al laboratorio para su examinación al microscopio. Las muestras para el análisis cuantitativo de fitoplancton se obtuvieron sin filtrar, se fijaron con solución de lugol acidificado al 1 % y se mantuvieron en frío y oscuridad. El análisis cuantitativo se realizó con un microscopio invertido Olympus CKX41. Se utilizaron cámaras de sedimentación de 5 ml, las que se dejaron sedimentar 24 hs. Se calculó el error de recuentos aceptándose un error máximo de 10 % para la especie más abundante. Las densidades se expresaron en ind ml -1. Las muestras de zooplancton se obtuvieron filtrando 21 L de agua a través de una red de zooplancton de 55 µm de poro y se fijaron con formol al 4%. La determinación de la composición y abundancia zooplanctónica se llevó a cabo de la siguiente manera: en el caso del microzooplancton (rotíferos y larvas nauplii de los copépodos) de cada muestra se obtuvieron alícuotas con una pipeta Hensen-Stempel de 1 ml y se contaron en cámara de Sedgwick-Rafter del mismo volumen, utilizando microscopio óptico binocular. Las alícuotas de mesozooplancton (cladóceros, copépodos adultos y copepoditos) se obtuvieron con un submuestreador de Russell de 5 ml y el recuento se efectuó en una cámara de Bogorov de igual volumen, utilizando un microscopio estereoscópico. En cada caso, se calculó el error de recuentos aceptándose un error máximo de 10 % para la densidad total de individuos. Las densidades se expresaron en individuos por litro (ind/l).