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Entre las enfermedades transmitidas por alimentos (ETA), las parasitosis intestinales representan un grave problema en salud pública. En este marco, determinar el grado de contaminación parasitaria de los vegetales que se consumen crudos, permitirá inferir el grado de riesgo al cual se encuentra expuesta la población. Al respecto y basados en el hecho que existe una diversidad de métodos de detección, se planteó evaluar la recuperación parasitaria de tres de las metodologías más aplicadas en muestras de hortalizas. Además, se utilizó el índice Kappa de Fleiss (IK) para analizar la concordancia entre técnicas. Entre marzo de 2016 y diciembre de 2017, se recolectaron 36 muestras de hortalizas (acelga -Beta vulgaris var. cicla-, lechuga -Lactuca sativa- y radicheta -Cichorium intybus-) en diferentes quintas del cinturón hortícola del Partido de La Plata, Buenos Aires, Argentina. Se utilizaron las técnicas de lavado basadas en sedimentación espontánea (SE), sedimentación espontánea y acción mecánica (SEM) y agitación-decantación (AD). El sedimento resultante se examinó por observación directa y por métodos de enriquecimiento, sedimentación y flotación. El 61,1% (22/36) de las muestras resultaron positivas al menos a una de las tres técnicas utilizadas. La recuperación por cada técnica fue: AD 13,8%, SE 11,1% y SEM 5,5%. Las tres técnicas permitieron detectar la presencia de Blastocystis sp. y ooquistes compatibles con Cryptosporidium spp.; SE y AD recuperaron huevos de Ancylostomideos; AD demostró la presencia de Endolimax nana y Ascaris lumbricoides y SE huevos de Enterobius vermicularis. El IK según la escala de valoración del Landis y Koch, mostró baja concordancia entre las técnicas para Blastocystis sp. (IK: 0,4) y para los ooquistes compatibles con Cryptosporidium spp. (IK: 0,3), y moderada para A. lumbricoides (IK: 0,5) (p