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Para controlar el deterioro fúngico sobre materiales estructurales se requiere el uso de recubrimientos aditivados con biocidas. Entre los materiales bioactivos más estudiados se encuentran aquellos de tamaño nanométrico. Como precursores de las nanopartículas (Nps) desde un enfoque amigable con el ambiente es posible el uso de extractos vegetales [1]. Los extractos vegetales contienen metabolitos que cumplen la función de promover y estabilizar la obtención de Nps metálicas partiendo de soluciones acuosas de las sales correspondientes. En tal sentido, el uso de taninos resulta promisorio por el alto contenido de polifenoles y por encontrarse disponibles a nivel comercial. Los polifenoles pueden actuar como estabilizadores y reductores en la obtención de Nps metálicas según datos bibliográficos [1]. El objetivo de este trabajo fue caracterizar la actividad antifúngica de recubrimientos aditivados con Nps obtenidas a partir de tanino de Caesalpinia spinosa popularmente conocido como árbol de Tara.Las Nps de Ag fueron obtenidas partiendo de una solución acuosa de AgNO3 10-2M a la cual le fue adicionada en constante agitación la solución de tanino de tara (TT). Se emplearon dos concentraciones de TT: 500 y 1000 ppm. Este proceso se hizo a temperatura de 60°C y pH=7. La actividad antifúngica in vivo de las Nps estables en suspensión se evaluó mediante ensayo de crecimiento en Placa de Petri frente a Cladosporium sphaerospermun MN371394, Penicillium commune MN371392 y Lasiodiplodia theobromae MN371283. Para la preparación de los recubrimientos, se utilizó 3-Aminopropil trietoxisilano (AMEO) (Camsi-X, utilizado como se suministra). La cantidad de silano correspondiente se añadió en agitación constante a una solución que contenía 0,9 mL/mL de etanol y 0,06 mL /mL de Nps en suspensión, el pH se ajustó previamente a 4 con HNO3. La concentración final de silano fue del 2% (v/v). También se prepararon recubrimientos en los que se reemplazó el mismo volumen de Nps en suspensión por agua destilada. Después de 1 hora de hidrólisis, se sumergieron ladrillos de 4,0±0,4 cm3 en las soluciones durante 90 segundos y se dejaron secar durante 14 días a 25ºC [1]. Después de este tiempo, se evaluó la actividad antifúngica del recubrimiento sol-gel. Los ladrillos recubiertos se expusieron frente a las cepas de estudio para evaluar su resistencia al crecimiento fúngico. Las muestras (recubrimientos sol-gel con y sin Nps) se colocaron en placas de Petri con 10 mL de Agar Mínimo Mineral (MMA). Se utilizaron también ladrillos control sin recubrimientos. Cada ladrillo se inoculó con 50 μL de solución de esporas (105 esporas / mL). Las placas de Petri se incubaron a 28°C durante 30 días. El crecimiento fúngico observado en los ladrillos se informó como el porcentaje (%) del área cubierta y se clasificó como 0 (ninguno 0%), 1 (crecimiento en trazas ˂ 10%), 2 (crecimiento ligero 10-30%), 3 (crecimiento moderado 30-60%) y 4 (crecimiento intenso 60-100%) [2]. Al final de la prueba, los ladrillos se observaron mediante microscopía electrónica de barrido (SEM).Fue posible obtener Nps estables en suspensión a partir de las soluciones de tanino: TTA1 (1000 ppm)y TTA5 (500 ppm). Se observó inhibición en el crecimiento radial de las colonias. En función de laactividad antifúngica de las Nps en suspensión y del tamaño de partículas, TTA5 se utilizó como biocidaen la formulación del recubrimiento sol-gel. Fue posible la funcionalización de TTA5 en la matriz. Elcrecimiento fúngico observado sobre los ladrillos con recubrimiento sol-gel funcionalizado con TTA5e inoculados con C. sphaerospermun y L. theobromae fueron clasificadas con 0. En cambio, elcrecimiento de P. commune sobre ladrillos con el mismo tratamiento fue de 2. En este trabajo se obtuvouna película funcionalizada con un biocida (TTA5) obtenida a partir de síntesis verde, capaz de controlarel deterioro fúngico de materiales.

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