INVESTIGADORES
COHEN ana Carmen
congresos y reuniones científicas
Título:
Reversión de enanismo en arroz enano cv Tan-ginbozu por Acetobacter diazotrophicus
Autor/es:
COHEN A.; LUNA V; BOTTINI R
Lugar:
Mar del Plata
Reunión:
Congreso; XXII Reunión Nacional de Fisiología Vegetal; 1998
Institución organizadora:
Sociedad Argentina de Fisiología vegetal
Resumen:
Reversión de  enanismo en arroz enano cv. Tan-ginbozu por Acetobacter diazotrophicus Cohen A, Luna V, Bottini R. Laboratorio de Fisiología Vegetal, Fac. Cs. Ex., Fís-Quím. Y Nat., Universidad Nacional de Río Cuarto, 5800 Río Cuarto. INTRODUCCIÓN Se ha observado que la inoculación con ciertas bacterias estimula el crecimiento del sistema radical, in-crementando la absorción de agua y minerales por las plantas (6). La i-noculación con diferentes cepas de Azospirillum spp. promovió el cre-cimiento de raíces medido como nú-mero, longitud, peso seco y volu-men radical en maíz (5) y además revirtió la expresión para el carácter enano en arroz y maíz (7). Todos estos efectos han sido asociados, al menos parcialmente, con la producción de giberelinas (GAs) por la bacteria (2, 8). Acetobacter diazotrophicus, bacte- ria endofítica obligada en caña de azúcar y sorgo azucarado (3), pro-duce GA1, GA3 y AIA (1). Considerando que esta bacteria se encuentra dentro de los tejidos de la planta (3) se sugiere que la biosín-tesis de hormonas por el microorga-nismo promovería formación de raí-ces laterales y crecimiento de los te-jidos vegetales en general, en adi-ción a su rol en la fijación de N2. El objetivo de este trabajo fue estudiar la posible reversión de la expresión del gen de enanismo y el crecimien-to del sistema radical de plantas de arroz cv. Tan-ginbozu por A. diazo-trophicus. MATERIALES Y MÉTODOS Acetobacter diazotrophicus, cepa PAL 5, ATCC 49037, se cultivó en medio LB a 32°C y agitación conti-nua (80 r.p.m.) hasta fase estacio-naria. Semillas de arroz enano fueron de-sinfectadas con etanol e hipoclorito de Na 1 % y se hicieron germinar con Uniconazol 80 mM durante 48 h a 32°C. Luego se lavaron las semi-llas para eliminar el retardante y se las incubó 72 h a 32°C y luz fluo-rescente continua. Posteriormente se colocaron las plántulas en tubos con medio Fähraeus (4) donde fueron sometidas a los siguientes tratamientos: 1) medio estéril (con-trol); 2) inoculación con la bacteria (106 UFC.ml-1); 3) inocu-lación (107); 4) GA3 (1 ppm); 5) GA3 (10 ppm); 6) AIA (1 ppm); 7) AIA (10 ppm); 8) GA3 (1 ppm) + AIA (1 ppm); 9) GA3 (10 ppm) + AIA (10 ppm) Los tubos se llevaron a cámara de cultivo a 28°C y un fotoperíodo (luz fluorescente continua) de 16 h. Luego de 8 d se evaluó: volumen radical, PS de raíz y tallo, longitud de raíz y de primer entrenudo, nú-mero total de raíces, número de bacterias en tallo y raíz. RESULTADOS Y DISCUSIÓN El grado de infección en las plantas inoculadas fue satisfactorio, sobre todo a nivel radical (107 UFC.raíz-1). La inoculación con la bacteria (en ambas concentraciones) produjo una reversión parcial de la expre-sión del gen de enanismo, si bien el efecto no alcanzó el logrado con la aplicación permamente por vía radi-cal de GA3 (fig. 1). El volumen radical (fig. 2), número y longitud de raíces (datos no presentados) en las plantas inoculadas fue ligera-mente superior al control y los tra-tamientos hormonales. Este leve in-cremento podría deberse a una par-tición de nutrientes favorable al cre-cimiento de la parte aérea causado por GA3 en desmedro del sistema radical. Todos estos efectos dife-renciales entre tallo y raíz de la incoculación y las hormonas, serían consecuencia de las dosis de GA3 utilizada,así como la modalidad de suministro. De todos modos, el PS de los tallos inoculados con 107 UFC.ml-1 fue semejante al encontra-do en el tratamiento con 10 ppm de GA3 y ambos duplicaron al control (fig. 3). Esto demuestra que el cre-cimiento efectivo en masa sería in-ducido por la producción de GA3, por lo que la bacteria induciría un mayor crecimiento general de las plantas a través de la síntesis de GAs (1) o la hidrólisis de sus formas conjugadas (9) y no a la de AIA. BIBLIOGRAFÍA 1.      Bastián et al. 1998. Plant Growth Regul 24: 7-11. 2.      Bottini et al. 1989. Plant Physiol 90: 45-47. 3.      Döbereiner 1992. Symbiosis 13: 1-13. 4.      Fähraeus 1957. J Gen Microbiol 16: 347-381. 5.      Fulchieri et al. 1993. Plant Cell Physiol 34: 1305-1309. 6.      Kapulnik et al. 1985. Can J Bot 63: 627-631. 7.      Lucangeli & Bottini 1996. Biocell 20: 223-228. 8.      Piccoli 1997. Tesis doctoral, UNRC. 9.      Piccoli et al. 1998. Res. XXII Reun Arg Fis Veg.