INVESTIGADORES
MATILLER Valentina
congresos y reuniones científicas
Título:
Determinación de la hormona del crecimiento en suero y líquido folicular de vacas con Enfermedad Quística Ovárica.
Autor/es:
LEIVA C.; DURANTE, L; BELOTTI, M.; DÍAZ P.U.; MATILLER V; SALVETTI N.R.; ORTEGA H. H.; MARELLI, B.
Lugar:
Esperanza
Reunión:
Jornada; VII Jornada de Difusión de la Investigación y Extensión de la Facultad de Ciencias Veterinarias; 2019
Institución organizadora:
FCV-UNL
Resumen:
La hormona del crecimiento (GH) es producida por la adenohipófisis, estimula la liberación del factor de crecimiento análogo a insulina (IGF-I) en el hígado y es clave para el control y distribución de los nutrientes (3). GH es el principal regulador postnatal del crecimiento y del metabolismo en los mamíferos, juega un rol crítico en el control de la lactación, en el proceso de desarrollo y crecimiento de la glándula mamaria y en la fertilidad en el bovino. En diferentes especies se ha demostrado que la GH puede actuar selectivamente sobre los folículos ováricos, inhibiendo el crecimiento del folículo preovulatorio y estimulando el desarrollo de folículos subordinados. La función ovárica en el bovino está controlada por mecanismos de retroalimentación locales y sistémicos que aseguran que en más del 96% de los ciclos estrales sólo ovule un folículo. Diferentes estímulos sistémicos como las gonadotrofinas, la GH, el IGF-I y la insulina influyen en el crecimiento folicular (4). No obstante, factores producidos localmente, como IGF-I, foliculoestatina e inhibina, también tienen un rol modulador fundamental. La alteración o disrupción de la sincronía entre estos actores podría contribuir a la patogenia de enfermedades reproductivas como la enfermedad quística ovárica (EQO) o la persistencia de folículos anovulatorios, patologías que comprometen la eficiencia reproductiva de los rodeos lecheros. Los efectos somatotróficos y metabólicos de GH están mediados por el receptor de GH localizado en la membrana celular. El mecanismo de señalización de dicho receptor depende, principalmente, de la activación de dos familias de proteínas intracelulares: las JAKs (Janus kinasas) y las STATs (signal transducers and activators transcription), por lo que se lo conoce como la vía JAK-STAT (1). Las JAKs están asociadas al domino intracelular del receptor de modo que, luego de la unión de GH, estas proteínas son activadas por transactivación y luego fosforilan a las STATs. Las STATs fosforiladas translocan al núcleo donde se unen a elementos de respuesta específicos. El objetivo de este trabajo fue determinar la concentración de GH en el líquido folicular (LF) y el suero de bovinos lecheros con EQO diagnosticada a campo en relación a animales controles sanos. En el grupo EQO se incluyeron vacas con la enfermedad (n=10), luego del diagnóstico a campo y la confirmación del mismo (folículo mayor a 20 mm, con más de 10 días de persistencia, en ausencia de cuerpo lúteo y sin tono uterino). En estos animales, el folículo quístico fue aspirado mediante un sistema de ultrasonido Myndray Z6 vet, equipado con un transductor microconvexo de 5,0 MHz montado en una sonda transvaginal para aspiración folicular (Watanabe Tecnología Aplicada Ltda., Brasil). En el grupo control se utilizaron vacas Holando Argentino (n=12) con ciclos estrales normales, los cuales fueron sincronizados (día 35 ±3 posparto) mediante un protocolo Ovsynch con un dispositivo intravaginal (CIDR). Un día antes del momento de la ovulación (determinado mediante ecografía transrectal) se realizó el aspirado del folículo dominante según se menciona previamente. Además, en ambos grupos de animales se tomaron muestras de sangre por venopunción coccígea. Los LFs fueron refrigerados y transportados al laboratorio para su procesamiento y almacenamiento a -80°C hasta su uso. Las muestras de sangre fueron procesadas para la obtención de sueros, los cuales fueron alicuotados y almacenados a -80°C hasta su uso. Las determinaciones de GH en suero y LF fueron realizadas mediante radioinmunoensayo (RIA)2 en el Instituto de Biología y Medicina Experimental (IBYME-CONICET), Buenos Aires. Esta técnica permite evaluar la concentración de GH en diferentes muestras mediante un ensayo competitivo que utiliza un anticuerpo anti-GH y la hormona marcada radiactivamente. La concentración mínima detectable fue 0.76 ng/ml y la máxima 200 ng/ml. En la tabla 1 se muestra el promedio de las concentraciones de GH presentes en el suero y en LF del grupo EQO respecto al grupo de animales controles. Los resultados obtenidos fueron evaluados mediante el programa SPSS 10.1 utilizando el test t de Student para muestras independientes.Concentraciones de GH en sueronPromedio (ng/ml)Desvío estándarGrupo control125.0111.86Grupo EQO103.29*1.91Concentraciones de GH en líquido folicularnPromedio (ng/ml)Desvío stándarGrupo control126.6207.66Grupo EQO100.715*0.86Tabla 1: Concentraciones obtenidas de GH en suero y líquido folicular. El asterisco (*) indica diferencia significativa entre los grupos EQO y control (p < 0,05).Como se puede observar en los resultados de la Tabla 1, las concentraciones de GH en suero y LF en el grupo EQO fueron significativamente menores respecto a las del grupo control (p