INHIBICION DE BIOFILM BACTERIANO POR PRODUCTOS FUNGICOS

SORIA NAJ; CAMERANESI M; BORGES I; ARENA ME; LUCIARDI C; MARCINKEVICIUS K

Jornada; XIII Jornadas Científicas y Encuentro de Jóvenes Investigadores; 2012

UNT

Introducción: Los hongos entomopatógenos (HE) atacan insectos, los matan y los utilizan como sustrato. Sin embargo en el tegumento de los mismos y en su sistema digestivo existe una amplia variedad de bacterias; las que, al morir el insecto compiten con el hongo por consumirlo. Para lograr su colonización los HE, deben inhibir la proliferación de los competidores bacterianos mediante la síntesis de metabolitos fúngicos durante la infección.Los hongos entomopatógenos (HE) atacan insectos, los matan y los utilizan como sustrato. Sin embargo en el tegumento de los mismos y en su sistema digestivo existe una amplia variedad de bacterias; las que, al morir el insecto compiten con el hongo por consumirlo. Para lograr su colonización los HE, deben inhibir la proliferación de los competidores bacterianos mediante la síntesis de metabolitos fúngicos durante la infección. Objetivo: determinar si la presencia de restos de insectos en el medio de cultivo modifica el perfil de metabolitos fúngicos (MF) y si los mismos son capaces de inhibir el desarrollo del biofilm.determinar si la presencia de restos de insectos en el medio de cultivo modifica el perfil de metabolitos fúngicos (MF) y si los mismos son capaces de inhibir el desarrollo del biofilm. Materiales y métodos: Nomuraeae rileyi ARSEF (Farlow) Samson; 1972 [CNPAF]. Medio de cultivo Sabouraud- Maltosa con extracto de levadura al 1% (SMY). Se ensayó: Control hongo (A) medio de cultivo + 2% (v/v) de una suspensión de esporas (DO=0.9). Medio de inducción de metabolitos (B): medio + 2% (v/v) de una suspensión de esporas + 2% (p/v) de restos de insecto. Control Insecto (B): medio + 2% (p/v) de restos de insecto. Se incubó con agitación continúa durante 15 días. Luego se filtro y se realizó la extracción de dichos medios con Acetato de Etilo. Se cromatografió el extracto (B) con cloruro de metilo/acetato de etilo y se determinó la inhibición del desarrollo de biofilm deNomuraeae rileyi ARSEF (Farlow) Samson; 1972 [CNPAF]. Medio de cultivo Sabouraud- Maltosa con extracto de levadura al 1% (SMY). Se ensayó: Control hongo (A) medio de cultivo + 2% (v/v) de una suspensión de esporas (DO=0.9). Medio de inducción de metabolitos (B): medio + 2% (v/v) de una suspensión de esporas + 2% (p/v) de restos de insecto. Control Insecto (B): medio + 2% (p/v) de restos de insecto. Se incubó con agitación continúa durante 15 días. Luego se filtro y se realizó la extracción de dichos medios con Acetato de Etilo. Se cromatografió el extracto (B) con cloruro de metilo/acetato de etilo y se determinó la inhibición del desarrollo de biofilm de Pseudomonas aeruginosa ATCC 27853. Resultados y conclusiones: El extracto (A) inhibió un 16% la formación de biofilm por MF formados constitutivamente, el extracto (B) inhibió 32% indicando que los metabolitos formados por inducción aumentan la capacidad antibacteriana del extracto. Los eluatos del extracto B confirman estos resultados: las fracciones obtenidas con: CH2CL2/ AcOEt 9/1 inhibieron 3,19 y 23%; CH2CL2/AcOEt 7/3 inhibieron 14 y 26%; CH2CL2/AcOEt 6/4 inhibieron 23%, CH2CL2/AcOEt 1/1 inhibieron 7%, AcOEt puro inhibieron 55% y metanol puro 48%. Sugiriendo que existe más de un MF activo que inhibe el biofilm de Ps.aeuruginosa.ATCC 27853. Resultados y conclusiones: El extracto (A) inhibió un 16% la formación de biofilm por MF formados constitutivamente, el extracto (B) inhibió 32% indicando que los metabolitos formados por inducción aumentan la capacidad antibacteriana del extracto. Los eluatos del extracto B confirman estos resultados: las fracciones obtenidas con: CH2CL2/ AcOEt 9/1 inhibieron 3,19 y 23%; CH2CL2/AcOEt 7/3 inhibieron 14 y 26%; CH2CL2/AcOEt 6/4 inhibieron 23%, CH2CL2/AcOEt 1/1 inhibieron 7%, AcOEt puro inhibieron 55% y metanol puro 48%. Sugiriendo que existe más de un MF activo que inhibe el biofilm de Ps.aeuruginosa.El extracto (A) inhibió un 16% la formación de biofilm por MF formados constitutivamente, el extracto (B) inhibió 32% indicando que los metabolitos formados por inducción aumentan la capacidad antibacteriana del extracto. Los eluatos del extracto B confirman estos resultados: las fracciones obtenidas con: CH2CL2/ AcOEt 9/1 inhibieron 3,19 y 23%; CH2CL2/AcOEt 7/3 inhibieron 14 y 26%; CH2CL2/AcOEt 6/4 inhibieron 23%, CH2CL2/AcOEt 1/1 inhibieron 7%, AcOEt puro inhibieron 55% y metanol puro 48%. Sugiriendo que existe más de un MF activo que inhibe el biofilm de Ps.aeuruginosa.2CL2/ AcOEt 9/1 inhibieron 3,19 y 23%; CH2CL2/AcOEt 7/3 inhibieron 14 y 26%; CH2CL2/AcOEt 6/4 inhibieron 23%, CH2CL2/AcOEt 1/1 inhibieron 7%, AcOEt puro inhibieron 55% y metanol puro 48%. Sugiriendo que existe más de un MF activo que inhibe el biofilm de Ps.aeuruginosa.2CL2/AcOEt 6/4 inhibieron 23%, CH2CL2/AcOEt 1/1 inhibieron 7%, AcOEt puro inhibieron 55% y metanol puro 48%. Sugiriendo que existe más de un MF activo que inhibe el biofilm de Ps.aeuruginosa.2CL2/AcOEt 1/1 inhibieron 7%, AcOEt puro inhibieron 55% y metanol puro 48%. Sugiriendo que existe más de un MF activo que inhibe el biofilm de Ps.aeuruginosa.Ps.aeuruginosa.