Biocontrol de Bacillus subtilis sobre Fusarium verticillioides in vitro y a nivel de rizosfera de maiz

LILIA CAVAGLIERI, JULIETA ORLANDO, MARÍA I. RODRÍGUEZ, SOFÍA CHULZE Y MIRIAM ETCHEVERRY

Córdoba (Argentina)

Congreso; Congreso Internacional de Ciencia y Tecnología de los Alimentos; 2004

Agencia Córdoba Ciencia

El maíz es uno de los cereales más importantes a nivel mundial. Argentina produce alrededor de 19 toneladas por año y el 48% de esta producción es exportado. Fusarium verticillioides es el principal patógeno fúngico del maíz (Bacon et al., 2001) y la especie de Fusarium de mayor prevalencia en maíz en Argentina (González et al., 1995). Este patógeno causa severas pérdidas en la producción y calidad del cultivo además de producir fumonisinas en este sustrato, las cuales afectan la salud humana y animal. Los síntomas que produce F. verticillioides en el maíz a campo varían desde una infección asintomática hasta la podredumbre de todas las partes de la planta. El movimiento del hongo dentro de la planta joven desde las raíces, tallo y finalmente granos ha sido establecido en diferentes estudios (Oren et al., 2003). Dada su condición endofítica y al estar asociado universalmente al maíz y/o sus subproductos, este hongo debe ser controlado. El ingreso de F. verticillioides a través de las raíces ha sido poco tenido en cuenta como causa de la infección sistémica que lleva finalmente al hongo a producir fumonisinas en el grano. La influencia de agentes de control biológico que protejan las semillas y raíces como método apropiado para el control de patógenos fúngicos de rizosfera ya ha sido demostrado (Kerry et al., 2000), sin embargo, aún no ha sido evaluado el uso de Bacillus subtilis aplicado al tratamiento de semillas de maíz para prevenir la colonización rizosférica de F. verticillioides. Bacon, C.W., Yates, I.E., Hinton, D.M. and Meredith, F. 2001. Biological control of Fusarium moniliforme in maize. Environ. Health Persp. 109(2): 325--332. Doko M.B., Rapior S., Visconti A.  Schjoth J.E. (1995). Incidence and levels of fumonisin contamination in maize genotypes grown in europe and Africa. J. Agric. Food Chem. 43: 429-434 González, H. H. L., Resnik, S. L., Boca, R. T. and Marasas, W. F. O. 1995. Mycoflora of Argentinian corn harvested in the main production area in 1990. Mycopathologia 130: 29-36 Kerry, B.R. 2000. Rhizosphere interaction and the explotation of microbial agents for the biological control of plant-pathogenic fungi. Ann. Rev. Phytopathol. 38: 423--432. Lambert B., Leyns F., Van Rooyen L., Gosselé F., Papon I. Swings J. (1987). Rhizobacteria of maize and their antifungal activities. Appl. Environ. Microbiol. 53(8): 11866-1871 Nelson, P.E., Toussoun, T.A., and Marasas, W.F.O. 1983. Fusarium species. An illustrated manual for identification. The Pennsylvania State University Press. University Park and London. Oren, L., Ezrati, S., Cohen, D. and Sharon, A. 2003. Early events in the Fusarium verticillioides Maize interaction characterized by using a green fluorescent protein-expressing transgenic isolate. Appl. Environ.Microbiol. 69(3): 1695--1701. Seitz L, Mohr HE, Burroughs R, Sauer DB. Ergosterol as an indicator of fungal invasion in grains. Cereal Chemistry 1977; 54:1207-1217 Shephard G.S., Thiel P.G., Stockenstrom S. & Sydenham E. (1996). Worldwide survey of fumonisin contamination on corn and corn-based products. J. AOAC Int. 79: 671-687 Weller, D.M. and Cook, R.J. 1986. Increased growth of wheat by seed treatment with fluorescent pseudomonads and implications of Pythium control. Can. J. Plant Pathol. 8: 328--334