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El objetivo del presente trabajo fue obtener plantas de Butia yatay mediante el cultivo in vitro de semillas y embriones por la dificultad que presenta esta palmera para germinar mediante métodos convencionales. Los frutos fueron escarificados mecánicamente mediante la eliminación del mesocarpio y del endocarpio para obtener las semillas. Las mismas fueron desinfestadas sumergiéndolas durante 3 minutos en alcohol 70º y luego en Hipoclorito de Sodio al 2,5% durante 20 minutos. Se realizaron 3 enjuagues con agua destilada esterilizada en cabina de flujo laminar de aire estéril. Con las semillas desinfestadas se realizaron 2 experimentos: siembra directa y siembra de embriones extraídos de las semillas. Se utilizaron tubos de ensayo de 2,5 cm de diámetro X 20 cm de largo (1 semilla o embrión por tubo) y frascos de vidrio de 120 y 350 ml conteniendo 10 semillas o embriones. El medio de cultivo utilizado fue el Murashige & Skoog en fórmula completa (MS) o diluido al 50% (½ de MS) mantenido en 3% el nivel de sacarosa solos o combinados con Ácido Naftalenacético (ANA), Ácido Indolacético (AIA), Ácido Indolbutírico (AIB) en concentraciones de 0, 0.1 y 1 mg/L y/o Bencilaminopurina (BAP) y Thidiazurón (TDZ) en concentraciones de 0, 0.01, 0.1 y 1 mg/L. El pH fue ajustado a 5,8 y solidificados con agar (6 g/L) y esterilizados en autoclave durante 20 minutos a 1 atm de presión. Los tubos y/o frascos cultivados fueron colocados en un cuarto climatizado a 27 ºC ± 2 ºC y con 14 hs de luz (116 μmol.m2.s-1) Los mejores resultados preliminares se lograron a los 90 días con embriones aislados cultivados en tubos y en los medios constituidos por ½ de MS más la adición de ANA 0.1 mg/L combinados con BAP 0.1 y 1 mg/L. Medios frescos de igual composición y adicionados con 0.5 g/L de carbón activado se utilizaron para promover el enraizamiento. Los mejores resultados preliminares se lograron a los 90 días con embriones aislados cultivados en tubos y en los medios constituidos por ½ de MS más la adición de ANA 0.1 mg/L combinados con BAP 0.1 y 1 mg/L. Medios frescos de igual composición y adicionados con 0.5 g/L de carbón activado se utilizaron para promover el enraizamiento. Los mejores resultados preliminares se lograron a los 90 días con embriones aislados cultivados en tubos y en los medios constituidos por ½ de MS más la adición de ANA 0.1 mg/L combinados con BAP 0.1 y 1 mg/L. Medios frescos de igual composición y adicionados con 0.5 g/L de carbón activado se utilizaron para promover el enraizamiento. Los mejores resultados preliminares se lograron a los 90 días con embriones aislados cultivados en tubos y en los medios constituidos por ½ de MS más la adición de ANA 0.1 mg/L combinados con BAP 0.1 y 1 mg/L. Medios frescos de igual composición y adicionados con 0.5 g/L de carbón activado se utilizaron para promover el enraizamiento. Los frutos fueron escarificados mecánicamente mediante la eliminación del mesocarpio y del endocarpio para obtener las semillas. Las mismas fueron desinfestadas sumergiéndolas durante 3 minutos en alcohol 70º y luego en Hipoclorito de Sodio al 2,5% durante 20 minutos. Se realizaron 3 enjuagues con agua destilada esterilizada en cabina de flujo laminar de aire estéril. Con las semillas desinfestadas se realizaron 2 experimentos: siembra directa y siembra de embriones extraídos de las semillas. Se utilizaron tubos de ensayo de 2,5 cm de diámetro X 20 cm de largo (1 semilla o embrión por tubo) y frascos de vidrio de 120 y 350 ml conteniendo 10 semillas o embriones. El medio de cultivo utilizado fue el Murashige & Skoog en fórmula completa (MS) o diluido al 50% (½ de MS) mantenido en 3% el nivel de sacarosa solos o combinados con Ácido Naftalenacético (ANA), Ácido Indolacético (AIA), Ácido Indolbutírico (AIB) en concentraciones de 0, 0.1 y 1 mg/L y/o Bencilaminopurina (BAP) y Thidiazurón (TDZ) en concentraciones de 0, 0.01, 0.1 y 1 mg/L. El pH fue ajustado a 5,8 y solidificados con agar (6 g/L) y esterilizados en autoclave durante 20 minutos a 1 atm de presión. Los tubos y/o frascos cultivados fueron colocados en un cuarto climatizado a 27 ºC ± 2 ºC y con 14 hs de luz (116 μmol.m2.s-1) Los mejores resultados preliminares se lograron a los 90 días con embriones aislados cultivados en tubos y en los medios constituidos por ½ de MS más la adición de ANA 0.1 mg/L combinados con BAP 0.1 y 1 mg/L. Medios frescos de igual composición y adicionados con 0.5 g/L de carbón activado se utilizaron para promover el enraizamiento. Los mejores resultados preliminares se lograron a los 90 días con embriones aislados cultivados en tubos y en los medios constituidos por ½ de MS más la adición de ANA 0.1 mg/L combinados con BAP 0.1 y 1 mg/L. Medios frescos de igual composición y adicionados con 0.5 g/L de carbón activado se utilizaron para promover el enraizamiento. Los mejores resultados preliminares se lograron a los 90 días con embriones aislados cultivados en tubos y en los medios constituidos por ½ de MS más la adición de ANA 0.1 mg/L combinados con BAP 0.1 y 1 mg/L. Medios frescos de igual composición y adicionados con 0.5 g/L de carbón activado se utilizaron para promover el enraizamiento. Los mejores resultados preliminares se lograron a los 90 días con embriones aislados cultivados en tubos y en los medios constituidos por ½ de MS más la adición de ANA 0.1 mg/L combinados con BAP 0.1 y 1 mg/L. Medios frescos de igual composición y adicionados con 0.5 g/L de carbón activado se utilizaron para promover el enraizamiento. Los frutos fueron escarificados mecánicamente mediante la eliminación del mesocarpio y del endocarpio para obtener las semillas. Las mismas fueron desinfestadas sumergiéndolas durante 3 minutos en alcohol 70º y luego en Hipoclorito de Sodio al 2,5% durante 20 minutos. Se realizaron 3 enjuagues con agua destilada esterilizada en cabina de flujo laminar de aire estéril. Con las semillas desinfestadas se realizaron 2 experimentos: siembra directa y siembra de embriones extraídos de las semillas. Se utilizaron tubos de ensayo de 2,5 cm de diámetro X 20 cm de largo (1 semilla o embrión por tubo) y frascos de vidrio de 120 y 350 ml conteniendo 10 semillas o embriones. El medio de cultivo utilizado fue el Murashige & Skoog en fórmula completa (MS) o diluido al 50% (½ de MS) mantenido en 3% el nivel de sacarosa solos o combinados con Ácido Naftalenacético (ANA), Ácido Indolacético (AIA), Ácido Indolbutírico (AIB) en concentraciones de 0, 0.1 y 1 mg/L y/o Bencilaminopurina (BAP) y Thidiazurón (TDZ) en concentraciones de 0, 0.01, 0.1 y 1 mg/L. El pH fue ajustado a 5,8 y solidificados con agar (6 g/L) y esterilizados en autoclave durante 20 minutos a 1 atm de presión. Los tubos y/o frascos cultivados fueron colocados en un cuarto climatizado a 27 ºC ± 2 ºC y con 14 hs de luz (116 μmol.m2.s-1) Los mejores resultados preliminares se lograron a los 90 días con embriones aislados cultivados en tubos y en los medios constituidos por ½ de MS más la adición de ANA 0.1 mg/L combinados con BAP 0.1 y 1 mg/L. Medios frescos de igual composición y adicionados con 0.5 g/L de carbón activado se utilizaron para promover el enraizamiento. Los mejores resultados preliminares se lograron a los 90 días con embriones aislados cultivados en tubos y en los medios constituidos por ½ de MS más la adición de ANA 0.1 mg/L combinados con BAP 0.1 y 1 mg/L. Medios frescos de igual composición y adicionados con 0.5 g/L de carbón activado se utilizaron para promover el enraizamiento. Los mejores resultados preliminares se lograron a los 90 días con embriones aislados cultivados en tubos y en los medios constituidos por ½ de MS más la adición de ANA 0.1 mg/L combinados con BAP 0.1 y 1 mg/L. Medios frescos de igual composición y adicionados con 0.5 g/L de carbón activado se utilizaron para promover el enraizamiento. Los mejores resultados preliminares se lograron a los 90 días con embriones aislados cultivados en tubos y en los medios constituidos por ½ de MS más la adición de ANA 0.1 mg/L combinados con BAP 0.1 y 1 mg/L. Medios frescos de igual composición y adicionados con 0.5 g/L de carbón activado se utilizaron para promover el enraizamiento. Butia yatay mediante el cultivo in vitro de semillas y embriones por la dificultad que presenta esta palmera para germinar mediante métodos convencionales. Los frutos fueron escarificados mecánicamente mediante la eliminación del mesocarpio y del endocarpio para obtener las semillas. Las mismas fueron desinfestadas sumergiéndolas durante 3 minutos en alcohol 70º y luego en Hipoclorito de Sodio al 2,5% durante 20 minutos. Se realizaron 3 enjuagues con agua destilada esterilizada en cabina de flujo laminar de aire estéril. Con las semillas desinfestadas se realizaron 2 experimentos: siembra directa y siembra de embriones extraídos de las semillas. Se utilizaron tubos de ensayo de 2,5 cm de diámetro X 20 cm de largo (1 semilla o embrión por tubo) y frascos de vidrio de 120 y 350 ml conteniendo 10 semillas o embriones. El medio de cultivo utilizado fue el Murashige & Skoog en fórmula completa (MS) o diluido al 50% (½ de MS) mantenido en 3% el nivel de sacarosa solos o combinados con Ácido Naftalenacético (ANA), Ácido Indolacético (AIA), Ácido Indolbutírico (AIB) en concentraciones de 0, 0.1 y 1 mg/L y/o Bencilaminopurina (BAP) y Thidiazurón (TDZ) en concentraciones de 0, 0.01, 0.1 y 1 mg/L. El pH fue ajustado a 5,8 y solidificados con agar (6 g/L) y esterilizados en autoclave durante 20 minutos a 1 atm de presión. Los tubos y/o frascos cultivados fueron colocados en un cuarto climatizado a 27 ºC ± 2 ºC y con 14 hs de luz (116 μmol.m2.s-1) Los mejores resultados preliminares se lograron a los 90 días con embriones aislados cultivados en tubos y en los medios constituidos por ½ de MS más la adición de ANA 0.1 mg/L combinados con BAP 0.1 y 1 mg/L. Medios frescos de igual composición y adicionados con 0.5 g/L de carbón activado se utilizaron para promover el enraizamiento. Los mejores resultados preliminares se lograron a los 90 días con embriones aislados cultivados en tubos y en los medios constituidos por ½ de MS más la adición de ANA 0.1 mg/L combinados con BAP 0.1 y 1 mg/L. Medios frescos de igual composición y adicionados con 0.5 g/L de carbón activado se utilizaron para promover el enraizamiento. Los mejores resultados preliminares se lograron a los 90 días con embriones aislados cultivados en tubos y en los medios constituidos por ½ de MS más la adición de ANA 0.1 mg/L combinados con BAP 0.1 y 1 mg/L. Medios frescos de igual composición y adicionados con 0.5 g/L de carbón activado se utilizaron para promover el enraizamiento. Los mejores resultados preliminares se lograron a los 90 días con embriones aislados cultivados en tubos y en los medios constituidos por ½ de MS más la adición de ANA 0.1 mg/L combinados con BAP 0.1 y 1 mg/L. Medios frescos de igual composición y adicionados con 0.5 g/L de carbón activado se utilizaron para promover el enraizamiento.