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La pared celular vegetal es una matriz extracelular especializada compuesta principalmente por celulosa y hemicelulosas (xilanos y glucanos) y dispuesta en dos fases, una amorfa y otra fibrilar, que se encuentran en un dinámico proceso de síntesis y degradación durante el desarrollo vegetal. En dichos procesos intervienen numerosas enzimas y proteínas, y un aspecto común de la estructura de la mayoría de las mismas es su organización modular. Esta organización incluye un dominio catalítico característico de cada enzima y uno o más módulos de unión a carbohidratos (CBMs) unidos por una cadena poco estructurada. La almidón sintasa III (SSIII) de Arabidopsis thaliana posee en su porción amino terminal tres regiones repetitivas con características de dominios de unión a almidón (o Starch Binding Domains, SBD) pertenecientes a la familia CBM53 no descriptos hasta entonces en enzimas vinculadas con procesos de síntesis. Habiendo demostrado in vitro la capacidad de unión de SBD a almidón, xilanos, pectinas y celulosa microcristalina (con una afinidad mayor para los sustratos de pared respecto al almidón), decidimos evaluar su comportamiento in vivo dirigiendo esta proteína hacia la pared celular vegetal (transformación de plantas de Arabidopsis con una construcción quimérica de SBDs y el péptido señal de la Expansina 8 de A. thaliana). La determinación de los niveles de pared celular total en las plantas transgénicas mostraron que estas líneas poseen menor contenido de polisacáridos de pared, principalmente en hojas de roseta, raíz y silicuas maduras. El análisis fenotípico reveló cambios en la morfología y tamaño de hojas, raíz e hipocótilo, además de tener pólen con menor capacidad germinativa. Por último, los niveles de expresión del ARNm CesA 1,3 y 6 (celulosa sintasas 1, 3 y 6) cuantificados indicarían que la síntesis de pared primaria estaría afectada.