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La transdiferenciación de células estromales a células deciduales tiene lugar fisiológicamente bajo el efecto de estrógeno y progesterona, y es la base del desarrollo de la decidua en el sitio de implantación del blastocisto. En trabajos anteriores hemos definido el patrón global de expresión génica asociado a la transdiferenciación decidual en la línea celular estromal normal derivada de útero de rata UIII. Estos estudios muestran a Cold Shock Domain C2 (Csdc2) como el gen más sobre-regulado (70 veces con respecto a células sin decidualizar) durante la diferenciación. El objetivo de este trabajo es estudiar la decidualización in vitro inducida por estrógeno y progesterona o 10% de suero libre de hormonas (DCC-FCS), relacionar la decidualización in vivo con el modelo in vitro y caracterizar la expresión de Csdc2 en ambos modelos. Para comprobar la diferenciación de las células UIII tratadas con progesterona (P) y estradiol (E) durante el cultivo, se midieron los niveles de ARNm de Desmina, marcador de decidualización tardío y Csdc2 durante 6 dias de cultivo. Experimentos preliminares mostraron mayor expresión de mensajero de Csdc2 y Desmina solamente en las células tratadas durante 6 días con E (2,4 veces vs T0) y con P+E (2,80 veces vs T0). Los ensayos de inmunoblot, mostraron una expresión basal de Desmina y Csdc2 sin variaciones entre los distintos tratamientos durante los 6 días analizados. Además, se compararon los niveles de ambas proteínas con los obtenidos de muestras de útero de rata no preñada y con 4, 6 y 8 días de preñez (dpc). Ambos genes tuvieron una cinética de expresión in vivo en aumento desde el día 0 al día 8dpc (Desmina 3.29; Csdc2 2.35 veces respecto a NP). Estos resultados muestran una correlación entre los niveles de Csdc2 in vitro e in vivo y permiten utilizar el sistema in vitro para estudiar el papel de Csdc2 durante la decidualización.